70. Mitkä ovat varotoimenpiteet kloorin määritykselle?
Kloori on erittäin epävakaa vesiliuoksessa, etenkin alhaisissa pitoisuuksissa, ja pitoisuus laskee nopeasti. Kloorin alennusaste kiihtyy, kun altistetaan auringonvalolle ja muulle voimakkaalle valolle tai levottomaksi. Siksi näytettä ei voida säilyttää näytteenoton jälkeen, ja kloorin määritys on käynnistettävä välittömästi välttäen samalla vesinäytteen valon altistumista ja sekoittamista.
Kaikkien määritysprosessin aikana toiminnan on vältettävä suoraa auringonvalon altistumista, ja on parasta suorittaa alhaisimmassa mahdollisessa lämpötilassa ja pehmeässä valossa. Lisäksi kaikki kolorimetriset menetelmät vaativat väri- ja sameuden aihiot raakaveden värin ja kromaattisuuden kompensoimiseksi, etenkin kun sameus ja kromaattisuus ovat korkeat, tyhjä arvo on määritettävä.
Kun käytetään O-tolidiinin visuaalista kolorimetristä menetelmää jäännöskloorin määrittämiseen, jos vesinäyte sekoitetaan tasaisesti tavanomaiseen O-tolidiiniliuokseen ja sitten kolorimetrinen menetelmä suoritetaan heti, mitattu tulos on vapaa jäännöskloori. Jos vesinäyte asetetaan pimeään paikkaan 10 minuutin ajan korkeimman kromaattisuuden tuottamiseksi ennen kolorimetrisen menetelmän suorittamista, tulos on kokonaisjäännöskloori. Kokonaisjäännöskloori miinus vapaa jäännöskloori on yhdistetty jäännöskloori.
Kun käytetään O-tolidiinin visuaalista kolorimetristä menetelmää määrittämään, jos jäännöskloori on suuri, tuotetaan oranssinkeltainen väri; Jos vesinäytteen alkalisuus on liian korkea ja jäännöskloori on pieni, tuotetaan vaaleanvihreä tai vaaleansininen väri. Tällä hetkellä voidaan lisätä 1 ml O-tolidiinitandardiliuosta normaalin vaaleankeltaisen värin tuottamiseksi.
71. Mitkä ovat erot biofilmimenetelmän biologisen vaiheen ja aktivoidun lietteen välillä?
Biofilminkäsittelyjärjestelmän biologiset faasiominaisuudet ovat erilaisia kuin aktivoidun lietteen prosessin ominaisuudet, pääasiassa mikrobilajien ja jakauman suhteen.
Yleisesti ottaen veden laadun asteittaisen muutoksen ja mikrobien kasvun ympäristöolosuhteiden paranemisen vuoksi biofilmijärjestelmän mikro -organismien tyypit ja määrät ovat enemmän kuin aktivoidun lietteen prosessin, ja ruokaketju on pitkä ja monimutkaisempi, etenkin kunkin filamenttisten sienten, prozoon ja metatsoonien ja metatsoonien ja metatso -bacter -bacter -bacter- ja metatso -bacter -bacter -bacter -bacter -bacter -bacter -bakteerien lukumääränsä lukumäärä. Levät voivat ilmestyä auringonvalolle alttiilla alueilla, ja myös hyönteiset, kuten suodatinkärpäset, voivat ilmestyä. Jakautumisominaisuudet ovat, että biofilmin paksuudessa (pinnasta sisälle) tai vaikuttavan (erilainen kosketusaika vaikutteisiin) suuntaan mikro -organismien tyypit ja määrät osoittavat suuria eroja. Monivaiheisen käsittelyn ensimmäisessä vaiheessa tai alaspäin suuntautuvan virtaustäytön täyteainekerroksen yläosassa biofilmiä hallitsevat usein flokkulenttiset bakteerit, ja kalvon paksuus on myös suhteellisen suuri (2-3 mm); Vaiheiden lukumäärän lisääntyessä tai alaspäin suuntautuvan virtauksen täyteainekerroksen alaosassa, koska sen kosketusveden laatu on osittain käsitelty, biofilmissä esiintyy vähitellen rihmamaisia bakteereja; Mikro-organismien tyypit kasvavat, mutta biofilmin paksuus laskee jatkuvasti (1-2 mm). Biofilmin pinnalla olevat mikro -organismit ovat kaikki aerobisia, ja paksuuden kasvaessa mikro -organismeista tulee vähitellen fakultatiivisia tai jopa anaerobisia.
Biofilmi on kiinnitetty suodatinmateriaaliin tai täyteaineeseen, ja biologinen kiinteän retentioajan SRT (lietteen ikä) on pitkä, joten se voi kasvattaa mikro -organismeja pitkän sukupolven ajan ja erittäin alhaisen lisääntymisnopeuden, kuten nitrifioivia bakteereja. Biofilmissä voi myös esiintyä suuri joukko rihmamahdollisia bakteereja, mutta lietteen liukenemista ei tapahdu. Verrattuna aktivoituun lietteen menetelmään, eläinravinteen osuus biofilmissä olevissa organismeissa on suurempi, myös mikro-animalien eloonjäämisaste on korkeampi ja se voi asua korkean ravintetason organismeissa. Oligochaetes ja hyönteiset asuvat saalistuskiilien, rotiferien ja nematodien yläpuolella. Siksi biofilmin ruokaketju on pidempi kuin aktivoidun lietteen ruokaketju, minkä vuoksi biokalvomenetelmällä tuotettu lietteen määrä on pienempi kuin aktivoidun lietteen menetelmän.
Kummankin tason tyypilliset mikro -organismit tai jokainen täyteainekerros ovat erilaisia jätevesien erilaisesta laadusta johtuen, toisin sanoen veden laadun muutokset aiheuttavat muutoksia biofilmin mikro -organismien tyyppeissä ja määrissä. Kun vaikuttava pitoisuus kasvaa, voidaan havaita, että alkuperäisen tason ominaiset mikro -organismit liikkuvat alaspäin, ts. Alun perin etutasolla tai täyteainekerroksella alun perin mikro -organismit voivat näkyä takatasolla tai alemmalla täyteainekerroksella. Siksi samanlaisia muutoksia voidaan havaita biologisen faasien havainnolla päätellen jäteveden pitoisuuden tai lietteen kuormituksen muutoksia.
72. Mitä bakteerien kokonaismäärän indikaattorin merkitys on vedessä?
Kokonaisbakteerimäärällä viittaa 1 ml: n vesinäyteessä kasvatettujen pesäkkeiden lukumäärään ravintoaineiden väliaineessa 37 ° C: n viljelyn jälkeen 24 tunnin ajan. Mittausyksikkö on yleensä kussakin ml: n sisältämien bakteerien kokonaismäärä. Veden bakteerien kokonaismäärä liittyy usein veden rungon orgaanisen pilaantumisen asteeseen, ja se on yksi tärkeimmistä indikaattoreista veden pilaantumisen asteen ja ihmiskehon mahdollisten haittojen arvioimiseksi.
Bakteerien kokonaismäärän analyysimenetelmä käyttää standardilevymenetelmää bakteerien laskemiseen vesinäytteessä, mikä on menetelmä aerobisten ja facultatiivisten anaerobisten heterotrofisten bakteerien tiheyden määrittämiseksi vedessä. Koska mikään ravintoainepohja tai mikään ympäristöolosuhde ei kuitenkaan voi täyttää kaikkien vesinäytteen bakteerien fysiologisia vaatimuksia, ja veden bakteerit voivat olla yksittäisten yksilöiden, parien, ketjujen, klusterien tai klusterien muodossa, mitattu pesäkkeiden lukumäärä on tosiasiallisesti pienempi kuin bakteerien lukumäärä, jotka todella selviävät testatussa vedenäytteessä.
73. Mitkä ovat varotoimet bakteerien kokonaismäärän määrittämiseksi?
Käytä aseptisen toimintamenetelmää absorboidaksesi 1 ml vesinäytettä tai 2-3 laimennettua vesinäytteitä sopivilla laimennuskertoimilla, injektoida ne steriloituun levyyn, kaada sitten 15 ml ravintoagaria -elatusainetta ja sekoita se huolellisesti vesinäytteen kanssa, tee kaksi rinnakkaista näytettä jokaiselle vesinäytteelle, ja myös tyhjään kontrolliin vain ravinteiden agar -väliaineella, joka kaadetaan vain ravintoauto -agar -väliaineella.
Kulttuurin jälkeen levypesäkkeiden lukumäärä tulisi suorittaa välittömästi. Jos laskenta on lykättävä, levy voidaan säilyttää ympäristössä 5-10oc, mutta ei yli 24 tuntia, ja tätä käytäntöä ei tule käyttää rutiininomaisena toimintamenetelmänä.
Laskeessasi levypesäkkeitä voit tarkkailla paljaalla silmällä. Jos haluat estää laiminlyöntiä suurennuslasilla, tarkistaaksesi tarvittaessa. Niille pesäkkeille, jotka näyttävät samanlaisilta ja ovat lähellä toisiaan, mutta eivät kosketa, niin kauan kuin etäisyys on pienempi kuin pienimmän pesäkkeen halkaisija, ne tulisi laskea erikseen. Ne siirtokunnat, jotka ovat läheisessä yhteydessä, mutta joilla on myös erilaisia esiintymisiä (morfologia tai väri), tulisi myös laskea erikseen.
Kun lasketaan saman laimennuksen keskimääräistä pesäkkeiden lukumäärää, jos jollakin levyillä on suuria hiutalepesäkkeitä, sitä ei pidä käyttää, ja laimennuksen pesäkkeenä tulisi käyttää levyä ilman hiutalepesäkkeitä. Jos hiutalepesäkkeet ovat alle puolet levystä ja jäljellä olevien pesäkkeiden jakautuminen on hyvin tasaista, tasaisen kasvun 1/2 pesäkkeen määrä voidaan kertoa 2: lla, joka edustaa koko levyn pesäkkeitä.
Bakteerien kokonaismäärän tulos on kunkin levyn pesäkkeiden kokonaismäärä tai saman laimennuksen yhdensuuntaisten kokeellisten levyjen keskimääräinen lukumäärä kerrottuna laimennus monella. Kun lopputulos on 100: n sisällä, tulos tallennetaan pesäkkeiden todellisen määrän mukaan; Kun se on suurempi kuin 100, käytetään kahta merkittävää lukua ja ilmaistaan eksponentina 10. Jos pesäkkeitä ei voida laskea, laimennus moninkertainen tulisi huomata tuloksen ilmoittamisessa.
74. Kuinka laskea bakteerien kokonaismäärä vesinäytteessä pesäkkeiden lukumäärän tuloksen perusteella?
Laskettaessa bakteerien kokonaismäärän testituloksia on tarpeen verrata ja laskea keskimääräisen pesäkkeiden lukumäärän perusteella eri laimennoksissa. Menetelmä on seuraava:
⑴ Valitse ensin tapaus, jossa siirtokuntien keskimääräinen lukumäärä on välillä 30–300 laskelmaa varten. Kun vain yhdellä laimennuksella olevien pesäkkeiden keskimääräinen lukumäärä täyttää tämän alueen, sen laimennoksella kerrottujen pesäkkeiden keskimääräinen lukumäärä käytetään vedenäytteen bakteerien kokonaismäärän seurauksena.
⑵ Jos kolonien keskimääräinen lukumäärä kahdessa laimennuksessa on välillä 30–300, laskentamenetelmä tulisi määrittää näiden kahden suhteen mukaan. Jos suhde on alle 2, keskimääräisen pesäkkeen määrän keskiarvoa kerrottuna laimennus moninkertaisesti on käytettävä vesinäytteen kokonaisbakteerimäärän tuloksena; Jos suhde on suurempi kuin 2, pienempi keskimääräisestä pesäkkeen määrästä kerrottuna sen laimennusta varten on käytettävä vesinäytteen kokonaisbakteerimäärän tuloksena.
Jos kaikkien laimennusten keskimääräinen pesäkkeiden lukumäärä on suurempi kuin 300, suurimman laimennuksen keskimääräistä määrää, joka kerrottuna sen laimennus moninkertaisesti, käytetään vesinäytteen kokonaisbakteerimäärän seurauksena.
Jos kaikkien laimennusten keskimääräinen pesäkkeiden lukumäärä on alle 30, pienimmän laimennuksen keskimääräistä pesäkkeen määrää, joka kerrottuna sen laimennoksella, on käytettävä vesinäytteen kokonaisbakteerimäärän seurauksena.
Jos kaikkien laimennusten keskimääräinen pesäkkeiden lukumäärä ei ole välillä 30–300, keskimääräistä pesäkkeiden lukumäärää, joka on lähinnä 30 tai 300 kerrottuna sen laimennoksella, on käytettävä vesinäytteen kokonaisbakteerimäärän seurauksena.
75. Mikä on koliformismäärän (arvo) merkitys?
Koliformbakteerit viittaavat luokkaan aerobisia tai fakultatiivisia anaerobisia, laktoosfermentointia, gram-negatiivisia, itiöttömiä sauvoja, joten niitä kutsutaan joskus myös fekaalisiksi koliformeiksi tai Escherichia coliksi. Koliformbakteerit voivat tuottaa happoa ja kaasua sen jälkeen, kun ne on viljelty laktoosin väliaineessa 37 ° C: ssa 24 tunnin ajan. Koliformisten bakteerien lukumäärä (arvo) mitataan yleensä 1L tai 100 ml vettä sisältävien koliformisten bakteerien lukumäärässä.
Jos vesilähde on saastunut uloste, se voi saastuttaa suoliston patogeenit ja aiheuttaa suoliston tartuntatauteja. Koska suoliston taudinaiheuttajat muodostavat suhteellisen pienen osan mikro -organismien lukumäärästä, on usein erittäin vaikea erottaa patogeenejä vedestä, erityisesti vesijohtovedestä. Koliform -bakteerit ovat yleisin ja suurin bakteerien tyyppi suoliston aerobisissa bakteereissa, joten niitä käytetään usein indikaattorina bakteereina fekaalisen saastumisen kannalta. Toisin sanoen vedessä olevien koliformisten bakteerien lukumäärää käytetään arvioimaan, onko vesilähde saastunut ulosteet, ja mahdollisuutta päätellä, että vesilähde on saastunut suoliston patogeeneistä.
76. Mitkä ovat menetelmät koliformisten bakteerien lukumäärän määrittämiseksi?
Kokonaiskoliformisten bakteerien määrittämiseen on kaksi yleisesti käytettyä menetelmää: monen putken käymismenetelmä ja kalvosuodatinmenetelmä.
Monen putken käymismenetelmä perustuu koliformisten bakteerien, kuten laktoosin käymisen, gram-negatiivisen värjäyksen, ei-itiöiden ja sauvamuotoisten ominaisuuksiin. Se testataan kolmen vaiheen avulla vesinäytteen koliformisten bakteerien kokonaismäärän määrittämiseksi. Monen putken käymismenetelmä käyttää todennäköisimpiä lukuja kokeellisten tulosten ilmaisemiseksi, joka tunnetaan myös nimellä MPN. Se on oikeastaan menetelmä E. colin tiheyden ja terveyslaadun arvioimiseksi vesistöissä tilastollisen teorian perusteella. Tämä arvio on yleensä suurempi kuin todellinen luku. Koliformismäärän arvioitu arvo määritetään laimennuksella, joka osoittaa sekä positiivisia että negatiivisia tuloksia. Kun suunnittelet vesinäytteen testaamiseen tarvittavien toistojen lukumäärän, sen tulisi perustua vaaditun datan tarkkuuteen.
Membraanisuodatinmenetelmä käyttää erityistä steriloitua mikrohuokoista kalvoa vesinäytteen suodattamiseen. Kun bakteerit on loukkuun kalvoon, kalvo on kiinnittynyt fuchsiinin natriumsulfiittiviljelyalustaan viljelmään. Koska koliform-bakteerit voivat käydä laktoosia, purppurapunaiset pesäkkeet, joilla on metallinen kiilto, ilmestyvät viljelyn jälkeen suodatinkalvolla. Laskemalla suodatinkalvolla olevien pesäkkeiden lukumäärä, joka on jokaisessa vesinäytteen litrassa olevien koliformisten bakteerien lukumäärä. Suodatinkalvomenetelmä voi mitata suuremman vesinäytteiden tilavuuden ja voi saada tuloksia nopeammin kuin monen putken käymismenetelmä, mutta vaikutus on heikko, kun sameus on korkea ja ei-e: n tiheys. Coli -bakteerit ovat korkeat.
77. Mikä on jäännöskloori?
Jäännöskloori on veteen jäljellä oleva kloori sen jälkeen, kun vesi on desinfioitu kloorilla tietyn ajanjakson ajan. Sen tehtävänä on ylläpitää jatkuvia bakteereja tappavia kykyjä. Siitä lähtien, kun vesi tulee putkiverkkoon vesipisteeseen, vedessä olevan desinfiointiaineen vaikutus on ylläpidettävä mahdollisten patogeenivaurioiden ja uudelleen kasvun estämiseksi. Tämä edellyttää, että veteen lisätyn desinfiointiaineen määrän ei pitäisi vain tyydyttää taudinaiheuttajien tappamisen tarpeita, vaan myös säilyttää tietyn määrän jäännösmäärää estämään patogeenien uudelleenkasvu veden kuljetusprosessin aikana. Jos käytetään kloorin desinfiointia, silloin desinfiointiaineen ylittäneen desinfiointiaineen osa on tuolloin jäännöskloori.
Jäännöskloorilla on kaksi muotoa: vapaa jäännöskloori (CL2, HOCL ja OCL-) ja yhdistetty jäännöskloori (NH2CL, NHCL2 ja NCL3). Nämä kaksi muotoa voi esiintyä samassa vesinäytteessä samanaikaisesti, ja näiden kahden summaa kutsutaan jäännösklooriksi. Vapaalla jäännöskloorilla on vahva bakteeritaides kyky, mutta se on helppo hajottaa. Yhdistetyllä jäännöskloorilla on heikko bakterisidinen kyky, mutta se kestää pidempään vedessä. Yleensä, kun vedessä ei ole ammoniakkia tai ammoniumia, jäännöskloori on vapaa jäännöskloori, kun taas vedessä on ammoniakkia tai ammoniumia, jäännöskloori sisältää yleensä vain yhdistettyä jäännösklooria ja joskus jäännösklooria ja yhdistettyä jäännöskatsoriseaa. Jäännöskloorin määrän on oltava sopiva. Liian matalalla ei ole merkitystä taudinaiheuttajien estämisessä ja hoidossa. Liian korkea ei vain lisää desinfiointien kustannuksia, vaan se voi myös aiheuttaa haittaa ihmiskeholle, kun se on yhteydessä ihmiskehoon.
Käsitteellisesti kloorikloori viittaa kloorikaasu- ja kloorisarjan desinfiointiaineille. Kun käytät muita ei-kloori-desinfiointiaineita, kuten klooridioksidia, jäännöskloori tulisi ymmärtää, koska jäljellä oleva desinfiointiaine jätetään veteen tietyn kosketusjakson jälkeen.
78. Mitkä ovat menetelmät jäännöskloorin määrittämiseksi? Mitkä ovat heidän sovellettavat laajuudet?
Jäännöskloorin määrittäminen voidaan suorittaa jodin titrauksella, O-tolidiinin visuaalisella kolorimetrialla, N, N-dietyyli-P-fenyleenidiamiinilla (DPD) rautatitrauksella (GB 11897-89), N, N-dietyyli-P-fenylenediamiinin spektrofotometria (GB 11898-89). Jäännöskloori vesinäytteessä; O-tolidiinin visuaalinen kolorimetrimenetelmä voi määrittää vastaavasti kokonaisjäännöskloorin ja vapaan jäännöskloorin muuttamalla toimintamenetelmää; N, N-dietyyli-P-fenyleenidiamiinitratiomenetelmä tai spektrofotometriamenetelmä voi määrittää vapaan kloorin tai kokonaiskloorin pitoisuusalueella 0,03-5 mg/l, ja voidaan myös määrittää toimintamenettely, voidaan määrittää myös vastaavasti monokloramiini, dikloramiini ja jotkut yhdistelmäkloorikomponentit.
Jodin titrausmenetelmä sopii vesinäytteille, joiden jäännösklooripitoisuus on yli 1 mg/l, ja se on yleisesti käytetty menetelmä lisätyn kloorimäärän määrittämiseen. O-tolidiinin visuaalinen kolorimetrinen menetelmä on helppo käyttää ja on yleinen menetelmä juomaveden jäännöskloorin määrittämiseksi. Mittausalue on 0,01-10 mg/l. N, N-dietyyli-P-fenyleenidiamiinin titrausmenetelmällä tai spektrofotometriamenetelmällä on suuri herkkyys ja se voi määrittää vesinäytteet, joilla on alhainen jäännösklooripitoisuus. Se sopii käytettävissä olevan kloorin kokonaismäärän määrittämiseen viemäriin, joka sisältää orgaanista ainetta. Kahden menetelmän mittausalueet ovat vastaavasti 0,05-1,5 mg/l ja 0,03-5 mg/l.